一、引言

隨著現(xiàn)代生物技術的飛速發(fā)展，植物基因工程已成為改良植物品種、提高農(nóng)作物產(chǎn)量和品質(zhì)的關鍵技術。在眾多的基因轉(zhuǎn)移方法中，電激法以其更好的優(yōu)勢受到了廣泛關注。電激法是利用短暫的高壓電脈沖作用于植物細胞，使細胞膜的通透性暫時增加，從而促進外源基因進入細胞的一種物理方法。在實驗室環(huán)境下，它為基因功能研究和基因轉(zhuǎn)化機制探索提供了有力手段；在田間應用中，電激法有望突破傳統(tǒng)育種的局限，為農(nóng)業(yè)生產(chǎn)帶來新的變革。無論是對于基礎研究還是實際應用，深入了解電激法在植物基因工程中的應用都具有極其重要的意義。

二、電激法的原理

（一）細胞膜通透性改變

植物細胞膜通常對大分子物質(zhì)具有屏障作用。當施加電脈沖時，細胞膜在電場作用下發(fā)生極化，形成跨膜電位差。當電位差達到一定閾值時，細胞膜上會形成一些短暫的小孔，即電穿孔。這些電穿孔允許外源 DNA、RNA 或其他大分子物質(zhì)通過細胞膜進入細胞內(nèi)部，從而實現(xiàn)基因的導入。

（二）細胞內(nèi)外離子濃度變化

電脈沖還會引起細胞內(nèi)外離子濃度的劇烈變化。這種離子濃度變化可能會影響細胞內(nèi)的一些生理生化過程，如激活某些信號通路，有助于細胞對外源基因的攝取和整合。此外，離子濃度的改變可能會影響細胞膜的修復機制，使電穿孔在一定時間內(nèi)保持開放，增加基因?qū)氲臋C會。

三、實驗室中的電激法應用

（一）實驗材料準備

植物材料

選擇合適的植物組織或細胞作為受體。常見的有原生質(zhì)體、懸浮培養(yǎng)細胞、愈傷組織等。對于原生質(zhì)體的制備，通常采用酶解法，例如，從葉片組織中分離原生質(zhì)體時，使用纖維素酶和果膠酶混合液在特定的滲透壓條件下處理葉片，使細胞壁降解，釋放出原生質(zhì)體。在選擇植物材料時，要考慮植物的種類、生長狀態(tài)以及目標基因的表達特性。

緩沖液和外源基因

制備合適的電激緩沖液，其成分通常包括甘露醇、氯化鈣、HEPES 等，以維持合適的滲透壓和離子強度，保護細胞在電激過程中的活性。同時，準備好要導入的外源基因，一般是構建在合適的載體上，如質(zhì)粒載體，載體上含有目的基因、啟動子、終止子等必要的調(diào)控元件。

（二）電激參數(shù)設置

電場強度

電場強度是影響電激效果的關鍵參數(shù)之一。不同的植物材料對電場強度的耐受性不同。一般來說，電場強度范圍在 200 - 2000V/cm。對于較為敏感的原生質(zhì)體，較低的電場強度（如 200 - 500V/cm）可能更合適，以避免細胞過度損傷；而對于一些細胞壁較厚的細胞或組織，可能需要較高的電場強度。

脈沖持續(xù)時間和脈沖次數(shù)

脈沖持續(xù)時間通常在幾微秒到幾十毫秒之間，如 5 - 50μs。脈沖次數(shù)一般為 1 - 10 次。較短的脈沖持續(xù)時間和較少的脈沖次數(shù)可能不足以形成足夠的電穿孔，導致基因?qū)胄实拖拢坏^長的脈沖持續(xù)時間或過多的脈沖次數(shù)會嚴重損傷細胞，降低細胞的存活率和后續(xù)的基因表達水平。需要通過大量的預實驗來優(yōu)化這些參數(shù)。

（三）電激操作過程

細胞預處理

將準備好的植物細胞或組織懸浮在電激緩沖液中，使細胞充分分散。對于原生質(zhì)體，可在電激前將其置于冰上預冷一段時間，有助于提高細胞對電激的耐受性。

電激處理

將含有細胞和外源基因的電激緩沖液置于特制的電激杯中，電激杯兩端連接電激儀。根據(jù)預設的電場強度、脈沖持續(xù)時間和脈沖次數(shù)進行電激處理。在電激過程中，要確保電激儀的電極與電激杯良好接觸，避免產(chǎn)生電弧等異常情況。

后處理

電激完成后，將細胞在電激緩沖液中靜置一段時間，一般為 10 - 30 分鐘，讓細胞膜有時間修復。然后，將細胞轉(zhuǎn)移至合適的培養(yǎng)基中進行培養(yǎng)。對于原生質(zhì)體，培養(yǎng)基中需要添加合適的植物生長調(diào)節(jié)劑和營養(yǎng)物質(zhì)，以促進細胞壁再生和細胞分裂。對于懸浮培養(yǎng)細胞或愈傷組織，培養(yǎng)基的選擇要根據(jù)細胞的生長需求和目標基因表達的要求來確定。

（四）基因表達檢測與分析

分子生物學檢測方法

在培養(yǎng)一定時間后（如 24 - 72 小時），可采用多種分子生物學方法檢測目的基因是否成功導入并表達。常用的方法包括聚合酶鏈式反應（PCR），通過設計特異性引物擴增目的基因片段，判斷目的基因是否存在于細胞基因組中；逆轉(zhuǎn)錄 - 聚合酶鏈式反應（RT - PCR），用于檢測目的基因的轉(zhuǎn)錄水平；以及 Western blotting，檢測目的基因編碼蛋白的表達情況。

表型觀察

除了分子生物學檢測，還需要觀察細胞或組織在基因?qū)牒蟮谋硇妥兓＠?，如果導入的是與色素合成相關的基因，觀察細胞顏色的變化；如果是與抗逆性相關的基因，可通過模擬逆境條件（如高鹽、干旱等）來觀察細胞或組織的耐受性變化。

四、田野中的電激法應用

（一）大田植物材料處理

植株選擇與準備

在田間應用電激法時，選擇生長健壯、無病蟲害的植株。對于一些多年生植物，要選擇合適的生長階段，如在萌芽期或幼苗期進行電激處理可能更有利于基因?qū)牒秃罄m(xù)的生長發(fā)育。在處理前，對植株進行適當?shù)男藜?，去除多余的枝葉，以便于電激操作和減少對電場的干擾。

電極布置

根據(jù)植株的大小和形狀，設計合理的電極布置方案。對于小型植株，可以使用特制的夾式電極，將電極夾在植株的莖或葉柄等部位；對于大型植株，可能需要采用多點電極插入土壤或纏繞在植株主干等方式，以確保電場能夠覆蓋目標組織。

（二）田間電激參數(shù)調(diào)整

考慮環(huán)境因素的參數(shù)優(yōu)化

田間環(huán)境比實驗室復雜得多，需要考慮土壤濕度、溫度、空氣濕度等環(huán)境因素對電激效果的影響。例如，在潮濕的土壤環(huán)境下，可能需要適當降低電場強度，以避免電流泄漏和短路現(xiàn)象。在高溫環(huán)境下，要注意縮短電激處理時間，防止植株過度受熱損傷。一般來說，田間電激的電場強度可能會比實驗室中稍低，范圍在 100 - 1500V/cm，脈沖持續(xù)時間和脈沖次數(shù)也需要根據(jù)實際情況進行調(diào)整。

針對不同作物的參數(shù)調(diào)整

不同的農(nóng)作物對電激的反應也不同。例如，對于草本植物和木本植物，由于其組織結(jié)構和生理特性的差異，電激參數(shù)有很大區(qū)別。草本植物的細胞壁相對較薄，細胞含水量較高，可能對電激更敏感，電激參數(shù)應相對溫和；而木本植物的木質(zhì)部等結(jié)構可能會影響電場分布，需要更高的電場強度或特殊的電極設計來確?；蚰軌蛴行У貙氲侥繕思毎?。

（三）田間電激后的管理與監(jiān)測

植株護理

電激處理后，對植株進行精心護理。及時澆水，保持土壤適度濕潤，促進植株恢復。同時，根據(jù)需要施加適量的肥料，為植株生長提供充足的營養(yǎng)。對于受到電激損傷的部分，如出現(xiàn)局部枯萎或變色的枝葉，要及時修剪，以減少對植株整體生長的影響。

基因表達監(jiān)測與表型觀察

在整個生長季節(jié)，持續(xù)監(jiān)測導入基因在植株中的表達情況。可以定期采集葉片、花朵、果實等組織進行分子生物學檢測，如上述提到的 PCR、RT - PCR 和 Western blotting 等。同時，密切觀察植株的表型變化，包括生長速度、植株形態(tài)、抗病蟲害能力、產(chǎn)量和品質(zhì)等方面的變化。例如，如果導入的是抗蟲基因，觀察植株在田間自然蟲害情況下的受損程度；如果是提高果實品質(zhì)的基因，分析果實的大小、顏色、口感等指標的變化。

五、電激法的優(yōu)勢

（一）廣泛的適用性

電激法可用于多種植物，包括單子葉植物和雙子葉植物。無論是草本植物還是木本植物，都有成功應用電激法進行基因轉(zhuǎn)化的報道。這種廣泛的適用性使得電激法在植物基因工程領域具有很大的優(yōu)勢，尤其是對于一些難以通過傳統(tǒng)基因轉(zhuǎn)化方法處理的植物種類。

（二）操作相對簡單

與一些依賴復雜生物試劑或微生物載體的基因轉(zhuǎn)化方法相比，電激法的操作相對簡單。它主要依靠電激儀和基本的緩沖液等設備和試劑，不需要復雜的病毒載體構建或農(nóng)桿菌介導轉(zhuǎn)化所需的特殊菌株培養(yǎng)等步驟。這使得在實驗室和田間條件下都能相對容易地開展基因轉(zhuǎn)化實驗。

（三）可重復性高

在優(yōu)化了電激參數(shù)后，電激法的可重復性較高。只要保持相同的植物材料、電激條件和后續(xù)培養(yǎng)環(huán)境，就能得到較為穩(wěn)定的基因轉(zhuǎn)化結(jié)果。這種可重復性對于科學研究和農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中的基因工程應用都非常重要，有助于保證實驗結(jié)果的準確性和可靠性。

六、電激法面臨的挑戰(zhàn)

（一）細胞損傷問題

盡管電激法可以通過調(diào)整參數(shù)來減少細胞損傷，但在實際操作中，仍難以完整避免。過高的電場強度、過長的脈沖持續(xù)時間或過多的脈沖次數(shù)都會導致細胞死亡或活力下降。這不僅會降低基因轉(zhuǎn)化效率，還可能影響植株的正常生長發(fā)育。因此，如何在保證基因?qū)氲耐瑫r最大限度地減少細胞損傷是電激法面臨的一個重要挑戰(zhàn)。

（二）基因整合效率低

外源基因成功導入細胞后，其在植物基因組中的整合效率仍然較低。部分外源基因可能只是暫時存在于細胞內(nèi)，不能穩(wěn)定整合到基因組中，導致基因表達不穩(wěn)定或在后續(xù)的細胞分裂過程中丟失。提高基因整合效率需要進一步深入研究植物細胞的基因組結(jié)構和基因整合機制，以及探索新的電激參數(shù)組合或輔助處理方法。

（三）田間應用的復雜性

田間環(huán)境的復雜性給電激法的應用帶來了諸多困難。除了前面提到的環(huán)境因素對電激參數(shù)的影響外，還存在諸如大規(guī)模電極布置成本高、電激過程中的安全隱患（如觸電風險）以及難以精確控制每個植株的電激效果等問題。這些問題限制了電激法在田間大規(guī)模應用的推廣速度。

七、電激法與其他植物基因工程技術的結(jié)合

（一）與農(nóng)桿菌介導轉(zhuǎn)化法結(jié)合

農(nóng)桿菌介導轉(zhuǎn)化法是一種常用的植物基因工程技術。將電激法與農(nóng)桿菌介導轉(zhuǎn)化法結(jié)合，可以發(fā)揮各自的優(yōu)勢。例如，在農(nóng)桿菌侵染植物組織后，通過電激處理，可以促進農(nóng)桿菌向植物細胞內(nèi)轉(zhuǎn)移 T - DNA 的效率，同時也可能增強植物細胞對 T - DNA 的攝取和整合能力。這種結(jié)合方法可以在一定程度上提高基因轉(zhuǎn)化效率，擴大可轉(zhuǎn)化植物的范圍。

（二）與基因槍轟擊法結(jié)合

基因槍轟擊法是利用高速微彈將外源基因?qū)胫参锛毎姆椒āｋ娂しㄅc基因槍轟擊法結(jié)合時，電激處理可以在基因槍轟擊后對細胞進行處理，幫助修復細胞因微彈轟擊造成的損傷，同時促進外源基因的整合。這種聯(lián)合應用方式可以綜合兩種方法的優(yōu)點，提高基因?qū)牒驼系男Ч?/p>

八、結(jié)論

電激法作為一種重要的植物基因工程技術，在實驗室和田野中都有著廣泛的應用前景。通過深入研究電激法的原理和優(yōu)化操作參數(shù)，可以在一定程度上克服其面臨的挑戰(zhàn)，提高基因轉(zhuǎn)化效率和穩(wěn)定性。同時，與其他植物基因工程技術的結(jié)合為其進一步發(fā)展提供了新的思路。在未來的植物基因工程研究和農(nóng)業(yè)生產(chǎn)實踐中，電激法有望為培育優(yōu)良植物品種、提高農(nóng)作物產(chǎn)量和品質(zhì)發(fā)揮更加重要的作用。然而，我們也需要繼續(xù)探索和創(chuàng)新，以更好地適應復雜的實際應用環(huán)境和滿足不斷增長的農(nóng)業(yè)發(fā)展需求。